banner
Центр новостей
Наши клиенты знают, что могут рассчитывать на нас в плане доступных цен и превосходного качества.

Клеточный цикл

Jun 25, 2023

Природный метаболизм (2023 г.) Цитировать эту статью

1576 Доступов

22 Альтметрика

Подробности о метриках

Гомеостаз аминокислот имеет решающее значение для многих клеточных процессов. Хорошо известно, что аминокислоты компартментализируются с помощью градиентов pH, генерируемых между органеллами и цитоплазмой; однако динамика этого разделения не исследована. Здесь мы разработали высокочувствительный репортер pH и обнаружили, что основной отсек хранения аминокислот в Saccharomyces cerevisiae, лизосомоподобная вакуоль, подщелачивается перед делением клеток и повторно подкисляется по мере деления клеток. Динамика рН вакуоли требует поглощения внеклеточных аминокислот и активности TORC1, v-АТФазы и круговорота вакуолярного специфического липида фосфатидилинозитол-3,5-бисфосфата, который регулируется циклин-зависимой киназой Pho85 (CDK5 у млекопитающих). . Вакуольная регуляция pH обеспечивает секвестрацию и мобилизацию аминокислот из органеллы, что важно для функции митохондрий, гомеостаза рибосом и контроля размера клеток. В совокупности наши данные представляют новую парадигму использования динамической рН-зависимой компартментализации аминокислот во время роста/деления клеток.

Дрожжевая лизосомоподобная вакуоль является основной деградирующей органеллой и местом хранения метаболитов, аминокислот и ионов, необходимых для клеточной жизнеспособности во времена избытка или нехватки питательных веществ1. Макромолекулярная деградация и хранение метаболитов в лизосоме/вакуоли требуют поддержания кислого просвета по отношению к цитозолю, что в значительной степени достигается за счет высококонсервативной, АТФ-зависимой, перекачивающей протоны вакуольной АТФазы (v-АТФаза)1. Регуляция активности v-АТФазы функционализирует вакуоль, позволяя ей принимать пролиферативные решения для клетки. Благодаря реципрокным отношениям с главным регулятором роста TORC1 вакуоль интегрирует различные метаболические сигналы, такие как гликолитический поток и доступность азота, для запуска анаболических или катаболических клеточных путей2. Таким образом, регуляция v-АТФазы, вакуолярного pH и передача сигналов TORC1 функционально переплетены, чтобы считывать различные аспекты клеточного метаболизма и принимать решения о росте/отсутствии роста.

Важная функция вакуоли в регуляции клеточных пролиферативных решений обусловлена ​​ее способностью хранить аминокислоты. Примечательно, что степень компартментализации аминокислот в вакуолях очень специфична для определенных классов аминокислот. У дрожжей примерно 90% внутриклеточных основных аминокислот и 10% кислых аминокислот хранятся в вакуоли, тогда как все остальные классы аминокислот обогащены лишь умеренно3.

Функциональная важность компартментализации дискретных аминокислот во время роста клеток в условиях с избытком питательных веществ не совсем понятна; однако недавно было показано одно последствие нерегулируемой компартментализации. По мере старения дрожжевых клеток рН вакуолей увеличивается и уровень цитоплазматического цистеина увеличивается, что влияет на функцию митохондрий, изменяя биогенез железо-серных кластеров и способность органелл выполнять критические функции4,5. Это понимание важности вакуольной рН-зависимой компартментализации цистеина для функции митохондрий подчеркивает взаимосвязь органелларного гомеостаза во время старения, но поднимает вопрос, есть ли какая-либо роль в компартментализации различных классов аминокислот в молодых экспоненциально растущих клетках.

Хотя многие детали, касающиеся регуляции вакуолярной кислотности и хранения метаболитов, были обнаружены в условиях стрессовых факторов клеток, таких как голодание, осмотический шок или старение, динамика гомеостаза вакуолярного pH в условиях постоянного роста не была изучена из-за нехватки молекулярных инструментов. . В частности, не удалось наблюдать динамику рН вакуолей в отдельных дрожжевых клетках в течение длительных периодов времени с высоким временным разрешением и чувствительностью.

Здесь мы исследовали взаимосвязь вакуольной регуляции pH, клеточного гомеостаза аминокислот и клеточного цикла у дрожжей. Мы разработали новый флуоресцентный репортер, оптимизированный для более низкого pH просвета вакуоли, и использовали его для открытия ранее недооцененной регуляции вакуольного pH, связанной с клеточным циклом, в клетках, растущих в присутствии определенных аминокислот. Мы идентифицировали несколько высококонсервативных молекулярных путей, регулирующих эту динамику, и предоставили доказательства цикличности вакуолярного липидного фосфатидилинозитол-3,5-бисфосфата (PtdIns(3,5)P2), который, как известно, важен для координации активности TORC1 и v- АТФаза. Кроме того, мы показали, что эти изменения pH контролируют накопление и высвобождение аминокислот в вакуоли. Блокирование динамического подщелачивания вакуолярного рН в условиях с избытком питательных веществ приводит к усилению цитоплазматических генов биосинтеза аргинина и соответствующему подавлению генов митохондриального окислительного фосфорилирования и рибосом. Фенотипически это приводит к нарушению координации размера, при котором производятся дочерние клетки, и времени, которое они проводят в G1, прежде чем перейти к новому раунду синтеза ДНК.

twofold reduction in the oscillatory vacuolar pH amplitude relative to wild-type cells (Fig. 3a). These data suggest that the increase in intracellular amino acids that results from the SPS response is important to stimulate the oscillatory pH dynamics in the vacuole./p> 0.05, are colored in red and Arg1 is highlighted in green. c, Histograms of Arg1-mNeon expression analyzed by flow cytometry comparing Arg1 levels in wild-type and atg18∆ cells in medium containing amino acids (left, SDC, WT \(\underline{x}\) = 496.4 AU versus atg18∆ \(\underline{x}\) = 901.0 AU, two-sided t-test P < 2.2 × 10−16) and without amino acids (right, YNBD, WT \(\underline{x}\) = 3,235.1 AU versus atg18∆ \(\underline{x}\) = 3,520.6 AU, two-sided t-test P < 2.2 × 10−16). d, plot of a single amino acid’s oscillatory vacuolar pH amplitude (from Fig. 2d) versus the fold Arg1-mNeon induction in atg18∆ cells relative to WT. Error bars represent 95% CI./p>

3.0.CO;2-O" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F%28SICI%291097-0061%28199902%2915%3A3%3C191%3A%3AAID-YEA358%3E3.0.CO%3B2-O" aria-label="Article reference 32" data-doi="10.1002/(SICI)1097-0061(199902)15:33.0.CO;2-O"Article CAS PubMed Google Scholar /p>